Academic literature on the topic 'Freshwater fishes - Respiratory organs'
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Journal articles on the topic "Freshwater fishes - Respiratory organs"
Apriliani, Nurul Safitri, Hikmah Supriyati, and Muhammad Ja’far Luthfi. "Histological Study of Respiratory Organ of Betta sp." Proceeding International Conference on Science and Engineering 2 (March 1, 2019): 181–84. http://dx.doi.org/10.14421/icse.v2.81.
Full textYadav, Sapana, Shreoshi Haldar, Deepshikha, and Animesh Kumar Mohapatra. "Monocrotophos induced histopathological and biochemical Changes in gills, stomach and intestine of Anabas testudineus (Cuvier)." Journal of Applied and Natural Science 11, no. 2 (June 10, 2019): 534–44. http://dx.doi.org/10.31018/jans.v11i2.2110.
Full textWendelaar Bonga, S. E. "The stress response in fish." Physiological Reviews 77, no. 3 (July 1, 1997): 591–625. http://dx.doi.org/10.1152/physrev.1997.77.3.591.
Full textDykova, Iva, Jiri Lom, Jill M. Schroeder-Diedrich, Gregory C. Booton, and Thomas J. Byers. "Acanthamoeba Strains Isolated from Organs of Freshwater Fishes." Journal of Parasitology 85, no. 6 (December 1999): 1106. http://dx.doi.org/10.2307/3285675.
Full textDyková, I., I. Kyselová, H. Pecková, M. Oborník, and J. Lukes. "Identity of Naegleria strains isolated from organs of freshwater fishes." Diseases of Aquatic Organisms 46 (2001): 115–21. http://dx.doi.org/10.3354/dao046115.
Full textJones, A., and L. F. Khalil. "Characterisation of the muscular organs of paramphistomes from African freshwater fishes." Systematic Parasitology 16, no. 3 (July 1990): 227–40. http://dx.doi.org/10.1007/bf00009150.
Full textKumar, Deepak. "Air-breathing organs and Nervous control of respiration in Freshwater fishes." Research Journal of Science and Technology 12, no. 2 (2020): 143. http://dx.doi.org/10.5958/2349-2988.2020.00018.2.
Full textBibi, Fehmeeda, Shafqat Nawaz Qaisrani, Mazhar Ayaz, Mudasser Nazir, Atif Nisar Ahmad, Mian Muhammad Awais, Bushra Nisar Khan, and Masood Akhtar. "Occurrence of endoparasites in some selected fishes of Chenab river, Pakistan." Bangladesh Journal of Zoology 46, no. 1 (July 26, 2018): 53–61. http://dx.doi.org/10.3329/bjz.v46i1.37626.
Full textBanerjee, T. K. "Histopathology of respiratory organs of certain air-breathing fishes of India." Fish Physiology and Biochemistry 33, no. 4 (August 21, 2007): 441–54. http://dx.doi.org/10.1007/s10695-007-9170-5.
Full textSarder, Halima, Tahsin Khan, Mihir Lal Saha, Nusrat Jahan Punom, Shankar Chandra Mandal, and Mohammad Shamsur Rahman. "Prevalence and antibiotic susceptibility of Aeromonas hydrophila isolated from freshwater fishes." Journal of Fisheries 4, no. 3 (December 31, 2016): 411. http://dx.doi.org/10.17017/jfish.v4i3.2016.177.
Full textDissertations / Theses on the topic "Freshwater fishes - Respiratory organs"
Carvalho, Allan Charles Marques de. "Criopreservação de sêmen de tambaqui Colossoma macropomum em criotubo." Pós-Graduação em Zootecnia, 2013. https://ri.ufs.br/handle/riufs/6391.
Full textA criopreservação de sêmen em criotubos reduz o tempo necessário para o envase, congelamento e descongelamento das amostras, além de otimizar os procedimentos de fertilização artificial. No entanto, nenhum estudo ainda foi realizado com o sêmen de tambaqui neste recipiente. Assim, o objetivo do presente trabalho foi avaliar a influência do tipo de criotubo (1,6 e 4,5 mL) e do tempo de descongelamento (60ºC/70s e 60ºC/90s) sobre a qualidade e fertilidade do sêmen de tambaqui criopreservado. Para isso, amostras de sêmen foram diluídas em solução de congelamento (1:9 v/v) composta por 75% de glicose 290 mOsm, 10% de metilglicol e 5% de gema de ovo, sendo envasadas em criotubos de 1,6 e 4,5 mL, congeladas em vapor de nitrogênio líquido no botijão dry-shipper (-175ºC) e armazenadas em botijão criogênico a -196°C. Para avaliação do tempo de descongelamento do sêmen, os criotubos foram imersas em água a 60°C durante 70 s ou 90 s e a qualidade espermática imediatamente avaliada (Motilidade total - MT; Motilidade progressiva - MP; Velocidade curvilinear - VCL; Velocidade em linha reta - VSL e Velocidade média da trajetória - VAP). Neste estudo foi determinado também o tempo de viabilidade dos espermatozoides descongelados, mantidos sob refrigeração a 5°C e avaliados durante 24 horas. Além dos parâmetros de cinética espermática foram avaliadas a morfologia e a integridade da membrana plasmática dos espermatozoides. A capacidade de fertilização do sêmen foi avaliada a partir das amostras descongeladas no melhor tempo. Todos os parâmetros de cinética espermática apresentaram valores superiores quando as amostras de sêmen foram descongeladas por 90s em relação ao tempo de 70s, independentemente do tipo de criotubo. Não foram observadas diferenças significativas nos parâmetros de cinética espermática pós-descongelamento entre as amostras congeladas nos criotubos de 1,6 e 4,5 mL, com exceção da MT que foi superior nos criotubos de 1,6 mL (47±14%) em comparação com os criotubos de 4,5 mL (40±11%), independentemente do tempo de descongelamento. Após ativação, os espermatozoides reduziram significativamente os valores dos parâmetros de cinética dentro de 37 segundos, exceto a MT que se manteve constante neste período. Baseando-se na maior parte dos parâmetros espermáticos avaliados (VCL, VSL, VAP e Integridade da membrana plásmatica para ambos os criotubos e MT, MP e Morfologia espermática somente para o criotubo de 1,6 mL) o sêmen congelado manteve sua qualidade durante 3h após o descongelamento. A taxa de fertilização obtida com o sêmen in natura (74±6%) foi superior ao sêmen criopreservado (1,6 mL - 45±9% e 4,5 mL - 41±12%). Os dois criotubos não diferiram entre si neste parâmetro. Uma alta correlação significativa (p<0,05) foi observada entre a fertilização e a cinética espermática (MT - 89%; MP - 86%; VCL - 79%; VSL - 69% e VAP - 78%). Conclui-se que os criotubos de 1,6 e 4,5 mL podem ser utilizados na criopreservação do sêmen de tambaqui, sendo recomendado seu descongelamento a 60°C por 90s e seu uso em procedimentos de fertilização dentro de 3 horas após o descongelamento desde que mantido a 5°C.
Van, Pletzen Andre Johannes Jacobus. "'n Ondersoek na die moontlike invloed van vervoer en hantering van sekere varswatervis op die respiratoriese funksies van bloed." Thesis, 2014. http://hdl.handle.net/10210/9643.
Full textBarnhoorn, Irene Ellen. "Selected enzymes and heat shock protein 70 as biomarkers of pollution in the reproductive organs of freshwater fish." Thesis, 2008. http://hdl.handle.net/10210/1010.
Full textProf. J.H.J Van Vuren
Books on the topic "Freshwater fishes - Respiratory organs"
Zhabry presnovodnykh kostistykh ryb: Morfofunkt͡s︡ionalʹnai͡a︡ organizat͡s︡ii͡a︡, adaptat͡s︡ii͡a︡, ėvoli͡u︡t͡s︡ii͡a︡. Sankt-Peterburg: "Nauka", 1996.
Find full textMunshi, J. S. Datta. Air-breathing fishes of India, their structure, function, and life history. New Delhi: Oxford & IBH Pub. Co., 1992.
Find full textGlass, Mogens L. Cardio-Respiratory Control in Vertebrates: Comparative and Evolutionary Aspects. Berlin, Heidelberg: Springer-Verlag Berlin Heidelberg, 2009.
Find full text(Editor), Daniel Schlenk, and William H. Benson (Editor), eds. Target Organ Toxicity in Marine and Freshwater Teleosts, Volume 1: Organs. CRC, 2001.
Find full textG, Cowx I., and Lamarque P, eds. Fishing with electricity: Applications in freshwater fisheries management. Oxford: Fishing News Books, 1990.
Find full text1961-, Schlenk Daniel, and Benson William 1954-, eds. Target organ toxicity in marine and freshwater teleosts. London: Taylor & Francis, 2001.
Find full textBook chapters on the topic "Freshwater fishes - Respiratory organs"
Graham, Jeffrey B. "Respiratory Organs." In Air-Breathing Fishes, 65–133. Elsevier, 1997. http://dx.doi.org/10.1016/b978-012294860-2/50004-0.
Full textZacone, Giacome, Salvatore Fasulo, and Luigi Ainis. "Neroendocrine Epithelial Cell System in Respiratory Organs of Air-Breathing and Teleost Fishes." In International Review of Cytology, 277–314. Elsevier, 1995. http://dx.doi.org/10.1016/s0074-7696(08)62160-9.
Full text"Neurosecretory Cells (NEC's) in the Lung of Amphibians and Accessory Respiratory Organs of the Air-breathing Fishes and in Amphibian Carotid Labyrinth." In Airway Chemoreceptors in Vertebrates, 98. Science Publishers, 2009. http://dx.doi.org/10.1201/b10181-6.
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