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Relevant bibliographies by topics / Spermatozoïde / Journal articles

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Journal articles on the topic 'Spermatozoïde'

Author: Grafiati

Published: 4 June 2021

Last updated: 8 March 2025

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1

Buschiazzo, Antoine, Marina Yefimova, Nicolas Bourmeyster, et al. "Autophagie et spermatozoïde." médecine/sciences 35, no. 11 (2019): 852–58. http://dx.doi.org/10.1051/medsci/2019172.

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Abstract:

La spermiogenèse, étape ultime de la spermatogenèse, est un processus qui fait intervenir des acteurs qui participe à l’autophagie. C’est en effet lors de cette étape que se forme l’acrosome par fusion vésiculaire et que disparaît la majeure partie du cytoplasme du spermatozoïde. L’autophagie (littéralement « se manger soi-même »), en permettant l’élimination et le remplacement continuel des protéines et des organites non fonctionnels, assure le recyclage des constituants de la cellule. C’est un mécanisme cellulaire très conservé au sein des cellules eucaryotes. La machinerie de l’autophagie est également présente dans les spermatozoïdes. Elle régule la vitalité de ces cellules et leur mobilité. Les conséquences environnementales et comportementales sur l’autophagie et sur la spermatogenèse commencent à être étudiées. Le but de cette revue est de synthétiser les connaissances actuelles concernant les processus d’autophagie dans le gamète mâle mature.

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2

Rousseaux, S., A. K. Faure, J. Thévenon, et al. "Épigénétique du spermatozoïde." Gynécologie Obstétrique & Fertilité 34, no. 9 (2006): 831–35. http://dx.doi.org/10.1016/j.gyobfe.2006.07.012.

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3

Auroux, M., and E. Dulioust. "Environnement, spermatozoïde et descendance." médecine/sciences 11, no. 4 (1995): 571. http://dx.doi.org/10.4267/10608/2247.

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4

Bernard, Sele. "L’Equipement chromosomique du spermatozoïde." Andrologie 4, no. 1 (1994): 22–29. http://dx.doi.org/10.1007/bf03034616.

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5

ROUSSEAUX, S., A. FAURE, C. CARON, et al. "Organisation nucléaire du spermatozoïde." Gynécologie Obstétrique & Fertilité 32, no. 9 (2004): 785–91. http://dx.doi.org/10.1016/s1297-9589(04)00202-4.

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6

RIVES, N., N. MOUSSETSIMEON, L. SIBERT, et al. "Anomalies chromosomiques du spermatozoïde." Gynécologie Obstétrique & Fertilité 32, no. 9 (2004): 771–78. http://dx.doi.org/10.1016/s1297-9589(04)00205-x.

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7

May-Panloup, P., M. F. Chrétien, Y. Malthiery, and P. Reynier. "ADN mitochondrial du spermatozoïde." Gynécologie Obstétrique & Fertilité 34, no. 9 (2006): 847–54. http://dx.doi.org/10.1016/j.gyobfe.2006.06.016.

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8

Joly, Dominique. "Évolution, spermatozoïde et fertilité." Journal de la Société de Biologie 202, no. 2 (2008): 101–2. http://dx.doi.org/10.1051/jbio:2008012.

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9

ROUX, C., C. TRIPOGNEY, C. JOANNE, and J. BRESSON. "Qualité nucléaire du spermatozoïde : tests d'exploration de la chromatine des spermatozoïdes humains (protéines nucléaires)." Gynécologie Obstétrique & Fertilité 32, no. 9 (2004): 792–98. http://dx.doi.org/10.1016/s1297-9589(04)00199-7.

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10

Bouvet, Jean-François. "Le spermatozoïde, une «espèce» menacée ?" Sciences Humaines N° 284, no. 8 (2016): 62. http://dx.doi.org/10.3917/sh.284.0062.

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11

Rives, Nathalie, Louis Sibert, Sophie Mazurier, et al. "Comment identifier le spermatozoïde vivant?" Andrologie 12, no. 4 (2002): 332–41. http://dx.doi.org/10.1007/bf03034650.

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12

Levy, R., and C. Fallet. "Cytogénétique du spermatozoïde : quel intérêt ?" Journal de Gynécologie Obstétrique et Biologie de la Reproduction 39, no. 1 (2010): 17–21. http://dx.doi.org/10.1016/s0368-2315(10)70007-7.

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13

Esika, MJP, NM Loposso, AML Punga-Maole, et al. "Profil spermiologique des patients suivis pour infertilité à l’hôpital HJ de Kinshasa." Journal Africain des Cas Cliniques et Revues 8, no. 4 (2024): 371–80. https://doi.org/10.70065/24ja84.019l013012.

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Abstract:

Contexte : L’infertilité constitue un réel problème de santé publique dans le monde. L’implication de l’homme dans l’infertilité du couple a été longtemps méconnue en Afrique. Actuellement, la demande de prise en charge de l’infertilité devient importante, nécessitant une meilleure connaissance du profil de l’homme infertile. L’Objectif de cette étude était de décrire le profil spermiologique de l’homme infertile à Kinshasa. Méthodologie : Il s´agit d´une étude documentaire descriptive (2019 – 2023) sur 148 patients qui ont tous réalisé un spermogramme au laboratoire de l’hôpital HJ. Les résultats du spermogramme obtenus ont été classés selon les critères définis par l´OMS version 2021. Le test de spearman a été utilisé pour déterminer les corrélations entre les variables avec un seuil de signification de 5%. Résultats : L’âge médian était de 38 ± 14 ans (19 à 65 ans). La tranche d’âge la plus représentée était celle de la troisième décade (46%). Les anomalies du spermogramme étaient observées chez 73 patients (49,3 %) dont 20, 9% d’oligoasthénozoospermie, 12,8 % d’oligozoospermie, 10,8% d’azoospermie et 4,7% d’asthénozoospermie. La présence d’agglutination des spermatozoïdes était observée chez 112 patients (75,7%). Nous avons constaté une corrélation significative négative entre l’âge et le volume du sperme, et entre l’âge et motilité des spermatozoïdes, avec une p-value respectivement de 0,018 et de 0,011. Conclusion : Les anomalies cytologiques du sperme sont très variées. L’âge se présente comme un facteur influençant négativement le volume du sperme et la motilité des spermatozoïdes. L’agglutination des spermatozoïdes est présente chez la majorité de patients. Ainsi, une étude plus approfondie à la recherche des anticorps anti-spermatozoïde et de ses déterminants chez l’homme infertile congolais s’avère nécessaire. Mots-clés : Profil spermiologique, infertilité.

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14

David, Georges. "Vers une assistance médicale au spermatozoïde?" Biofutur 1996, no. 152 (1996): 19–21. http://dx.doi.org/10.1016/s0294-3506(96)80033-0.

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15

Guérin, P., A. Fontbonne, S. Buff, and Y. Ménézo. "La gouttelette cytoplasmique résiduelle du spermatozoïde." Andrologie 9, no. 3 (1999): 380–86. http://dx.doi.org/10.1007/bf03034811.

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16

Menezo, D’après la communication de Y. "L’ovocyte réparateur de l’ADN du spermatozoïde." Journal de Gynécologie Obstétrique et Biologie de la Reproduction 35, no. 5 (2006): 19–23. http://dx.doi.org/10.1016/s0368-2315(06)76434-1.

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17

Carré-Pigeon, F., I. Galeraud-Denis, and C. Marchetti. "Le spermatozoïde : sa vie, son œuvre." Gynécologie Obstétrique & Fertilité 37, no. 6 (2009): 510. http://dx.doi.org/10.1016/j.gyobfe.2009.04.013.

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18

Herbemont, C., and C. Sifer. "Comment choisir le spermatozoïde en ICSI ?" Gynécologie Obstétrique & Fertilité 42, no. 11 (2014): 800–805. http://dx.doi.org/10.1016/j.gyobfe.2014.07.030.

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19

Jouannet, P., and C. Serres. "Mouvement normal et pathologique du spermatozoïde humain." médecine/sciences 11, no. 4 (1995): 555. http://dx.doi.org/10.4267/10608/2245.

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20

Le Lannou, D. "L’analyse automatisée de la morphologie du spermatozoïde." Andrologie 7, no. 4 (1997): 427–32. http://dx.doi.org/10.1007/bf03035268.

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Gonzalès, J. "Histoire du spermatozoïde et mobilité des idées." Gynécologie Obstétrique & Fertilité 34, no. 9 (2006): 819–26. http://dx.doi.org/10.1016/j.gyobfe.2006.07.025.

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Rives, N., J. P. Milazzo, B. Arkoun, et al. "Gamète mâle… un spermatozoïde ou une spermatide ?" Gynécologie Obstétrique & Fertilité 40, no. 11 (2012): 671–74. http://dx.doi.org/10.1016/j.gyobfe.2012.09.017.

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Vonnez, Jean-Luc. "Ovule ou spermatozoïde ? L’acide rétinoïque en décide..." Revue Médicale Suisse 2, no. 61 (2006): 1013. http://dx.doi.org/10.53738/revmed.2006.2.61.1013.

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24

de Lamirande, E., and C. Gagnon. "Dérivés actifs de l'oxygène et fonctions du spermatozoïde." médecine/sciences 11, no. 4 (1995): 564. http://dx.doi.org/10.4267/10608/2246.

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25

Auvray, P., T. Guillaudeux, and B. Jégou. "Le spermatozoïde transgénique : une piste de recherche féconde ?" médecine/sciences 16, no. 1 (2000): 102. http://dx.doi.org/10.4267/10608/1509.

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26

Chevaillier, P., A. Martinage, A. Arkhis, and P. Sautière. "Les précurseurs des protamines dans le spermatozoïde humain." Reproduction Nutrition Développement 30, no. 3 (1990): 343–47. http://dx.doi.org/10.1051/rnd:19900307.

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27

Grandjean, V., and M. Rassoulzadegan. "Épigénétique du spermatozoïde : un rôle inattendu de l’ARN." Gynécologie Obstétrique & Fertilité 37, no. 6 (2009): 558–61. http://dx.doi.org/10.1016/j.gyobfe.2009.04.005.

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Mattei, Xavier, Yves Siau, and Bernard Seret. "Etude ultrastructurale du spermatozoïde du coelacanthe: Latimeria chalumnae." Journal of Ultrastructure and Molecular Structure Research 101, no. 2-3 (1988): 243–51. http://dx.doi.org/10.1016/0889-1605(88)90015-8.

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Bonneau, M., B. Hedon, S. Hamamah, and A. Torre. "Fécondation in vitro et injection intracytoplasmique d’un spermatozoïde." EMC - Gynécologie 33, no. 3 (2018): 1–20. https://doi.org/10.1016/s0246-1064(17)54734-9.

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30

Guénédal, ML, C. Falquet, S. Warter, et al. "Les risques liés à l'injection intracytoplasmique de spermatozoïde (ICSI)." médecine/sciences 17, no. 1 (2001): 44. http://dx.doi.org/10.4267/10608/1786.

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Grenaud, E´ric, Hervé Dechaud, Nathalie Aligier, and Bernard Hedon. "Fécondation in vitro et injection intracytoplasmique du spermatozoïde (ICSI)." EMC - Gynécologie 1, no. 1 (2006): 1–16. http://dx.doi.org/10.1016/s0246-1064(03)13747-4.

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Hamamah, S., M. Jean, and P. Barrière. "Interaction spermatozoïde - zone pellucide de l'ovocyte : importance dans l'immunocontraception." EMC - Gynécologie 4, no. 1 (2009): 1–5. http://dx.doi.org/10.1016/s0246-1064(09)43144-x.

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33

Justine, J. L., and X. Mattei. "Ultrastructure du spermatozoïde de trois Monogènes Polyopisthocotylea :Cemocotyle, Heteraxineetheteraxinoides." Annales de Parasitologie Humaine et Comparée 60, no. 6 (1985): 659–63. http://dx.doi.org/10.1051/parasite/1985606659.

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Bâ, C. T., and B. Marchand. "Étude ultrastructurale du spermatozoïde deMoniezia expansaetM. benedeni(Cestoda, Cyclophyllidea, Anoplocephalidae)." Annales de Parasitologie Humaine et Comparée 67, no. 4 (1992): 111–15. http://dx.doi.org/10.1051/parasite/1992674111.

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35

Sèle, B. "La micro-injection de spermatozoïde dans l'ovocyte ou fécondation assistée." Revue Française des Laboratoires 1995, no. 278 (1995): 57–59. http://dx.doi.org/10.1016/s0338-9898(95)80218-5.

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Benchaïb, M., M. Ajina, V. Braun, A. Niveleau, and J. F. Guérin. "Méthylation du spermatozoïde en Assistance médicale à la procréation (AMP)." Gynécologie Obstétrique & Fertilité 34, no. 9 (2006): 836–39. http://dx.doi.org/10.1016/j.gyobfe.2006.07.036.

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Mokhtar-Maamouri, F., and N. Azzouz-Draoui. "Spermiogenèse et ultrastructure du spermatozoïde deNematotaenia chantalaeDollfus, 1957 (Cestoda, Cyclophyllidea, Nematotaeniidae)." Annales de Parasitologie Humaine et Comparée 65, no. 5-6 (1990): 221–28. http://dx.doi.org/10.1051/parasite/1990655221.

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Escalier, Denise, and Aminata Touré. "Malformations de l’appareil flagellaire du spermatozoïde impliquées dans l’infertilité chez l’homme." médecine/sciences 28, no. 5 (2012): 503–11. http://dx.doi.org/10.1051/medsci/2012285015.

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Androutsos, Georges. "Anton van Leeuwenhoek (1632–1723) et la première description du spermatozoïde." Andrologie 14, no. 3 (2004): 336–42. http://dx.doi.org/10.1007/bf03034922.

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40

Sanaky, Marliyati, Irfan Idris, Siti Rafiah, and Aryadi Arsyad. "Pengaruh Pemberian Minuman Sopi Mayang Beralkohol terhadap Jumlah Spermatozoid, Pada Tikus Putih (Rattus norvegicus) Jantan." MAHESA : Malahayati Health Student Journal 4, no. 11 (2024): 4873–87. http://dx.doi.org/10.33024/mahesa.v4i11.15041.

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Abstract:

ABSTRACT The alcoholic Sopi drink comes from palm trees (Arenga pinnata MERR), a type of palm tree spread throughout almost all of Indonesia. The alcohol in the traditional Sopi drink is ethanol (CH3CH2-OH) from fermented sap. This study aimed to examine the effect of Sopi Mayang drink on the increase in cytochrome P450 mRNA expression, increase in CYP2E1 protein levels and decrease in the number of spermatozoids using male white rats. This research is laboratory experimental, using the Randomized Post-test Only Control Group Design. Giving Sopi Mayang with a dose of 2.7 ml decreased the number of spermatozoids, namely 33,815,000, compared to the control group without giving Sopi Mayang, namely 56,680,000 (p = 0.0001). Sopi Mayang, with a dose of 4.05 ml, decreased sperm count from 33,815,000 to 22,334,775 (p= 0.0001). Sopi Mayang, with a dose of 5.4 ml, decreased sperm count from 22,865,000 to 18,250,309 (p=0.0001). There was a decrease in the number of spermatozoids in mice given Sopi Mayang. Keywords: Alcohol, Sopi Mayang, Spermatozoid, white rats ABSTRAK Minuman Sopi beralkohol berasal dari pohon Enau/Aren (Arenga pinnata MERR) termasuk salah satu jenis tanaman palma, yang tersebar hampir di seluruh wilayah Indonesia. Alkohol yang terkandung dalam minuman tradisional Sopi adalah etanol (CH2CH3-OH) dari fermentasi nira. Penelitian ini ditujukan untuk melihat pengaruh minuman Sopi Mayang terhadap jumlah peningkatan ekspresi mRNA sitokrom P450, peningkatan kadar protein CYP2E1dan penurunan jumlah spermatozoid dengan menggunakan tikus putih jantan. Penelitian ini adalah eksperimental laboratoris, dengan menggunakan rancangan The Randomized Post-test Only Control Group Design. Pemberian Sopi Mayang dengan dosis 2,7 ml terjadi penurunan jumlah spermatozoid yaitu 33.815.000 dibandingkan dengan kelompok kontrol tanpa pemberian Sopi Mayang yaitu 56.680.000 (p = 0,0001). Sopi Mayang dengan dosis 4,05 ml terjadi penurunan jumlah sperma dari 33.815.000 menjadi 22.334.775 (p= 0,0001). Sopi Mayang dengan dosis 5,4 ml terjadi penurunan jumlah sperma dari 22.865.000 menjadi 18.250.309 (p=0,0001). Terjadi penurunan jumlah spermatozoid, pada tikus yang diberikan Sopi Mayang. Kata Kunci: Alkohol, Sopi Mayang, Spermatozoid, Tikus Putih

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Miller, C. C. J., J. G. Duckett, and B. Kirkham. "Gametogenesis: the playground of the developmental cytologist." Proceedings of the Royal Society of Edinburgh. Section B. Biological Sciences 86 (1985): 29–35. http://dx.doi.org/10.1017/s0269727000007910.

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Abstract:

SynopsisDevelopmental ultrastructural studies have led to major advances in our understanding of key questions ranging from the causal basis for the alternation of generations and the role of the cytoskeleton in cellshaping processes to the phylogeny of archegoniate plants. Oogenesis is characterised by profound nuclearcytoplasmic interactions accompanied by striking changes in the egg mitochondria and plastids. At fertilization, egg penetration is a physical process and the plastids from the spermatozoids are excluded from the egg. Considerable dissimilarity between the shapes of the biflagellate spermatozoids of Lycopodium and Selaginella underlines their ancient separation. Equally striking differences in spermatozoid architecture argue against any direct phyletic link between heterosporous and homosporous ferns. Taxonomic variations between the spermatozoids of homosporous ferns suggests blepharoplast morphology to be a potentially rich source of new systematic data. Whilst there is general agreement that the multilayered structure is a cytoskeletal alignment system, a proposed shape-generating system situated near the nuclear envelope, which provides the force necessary for spermatozoid morphogensis, has not yet been identified. New fixation procedures have revealed hitherto overlooked filamentous elements associated with the nucleus. Whereas tests for actin were negative, immunoblotting suggests that these contain the intermediate filament protein antigens.

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Selva, J., M. Bergère, N. Frydman, et al. "Analyse chromosomique des œufs humains non clivés après injection intracytoplasmique de spermatozoïde." Andrologie 5, no. 3 (1995): 382–88. http://dx.doi.org/10.1007/bf03034343.

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Schmitt, S. J., and K. S. Renzaglia. "Correlative Sem And Tem Of Plant Spermatozoids: Equisetum arvensel." Microscopy and Microanalysis 5, S2 (1999): 1260–61. http://dx.doi.org/10.1017/s1431927600019620.

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Abstract:

The phylogenetic position of mosses, ferns and fern allies is enhanced by detailed knowlegde of gametophyte reproductive structures, in particular the spermatozoid (freeswimming sperm). The number and placement of flagella in conjunction with their ultrastructure and that of the multilayered structure (MLS) has been used to establish related groups. Herein, ultrastructural details of pre-release spermatozoids obtained via TEM are compared with the morphological appearance of fully mature (free-swimming) spermatozoids obtained via SEM. This represents the first intensive study of any plant sperm cell that correlates 3-dimensional SEM images with TEM ultrastructural features.Equisetum arvense L. is a fern ally commonly refered to as ‘horsetail’. The mature spermatozoid (Fig. 1) is twisted into approximately 3.5 revolutions, or gyres. A complex locomotory apparatus (Fig. 2), involving approximately 55 flagella, dominates the anterior region of the cell. The basal bodies subtending these flagella feature a well-defined stellate pattern and occur in 4 irregular rows staggered over approximately 1.75 gyres.

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Guibert, Juliette. "Le spermatozoïde micro-injecté, nouvelles techniques, nouveaux enjeux dans l'assistance à la procréation." Raison présente 121, no. 1 (1997): 95–108. http://dx.doi.org/10.3406/raipr.1997.3385.

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Garcia-Legname, M., J. L. Cordonnier, P. Eschwege, B. Foliguet, C. Ayav, and J. Hubert. "À la recherche du spermatozoïde chirurgical : doit-on effectuer une biopsie testiculaire systématique ?" Progrès en Urologie 23, no. 1 (2013): 58–65. http://dx.doi.org/10.1016/j.purol.2012.10.002.

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Hocquet, D., C. Roux, M. A. Collonge-Rame, F. Fellmann, and J. L. Bresson. "Bilan des examens chromosomiques de 277 couples candidats à l’injection intracytoplasmique de spermatozoïde." Andrologie 9, no. 4 (1999): 505–10. http://dx.doi.org/10.1007/bf03034668.

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Bujan, Louis, and Philippe De Mas. "Génotoxicité des chimiothérapies et radiothérapies: Quelles sont les conséquences pour le spermatozoïde humain?" Andrologie 12, no. 3 (2002): 284–94. http://dx.doi.org/10.1007/bf03035141.

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Guérin, P., C. Matillon, G. Bleau, R. Lévy, and Y. Ménézo. "La fragmentation de l'ADN du spermatozoïde : impact en Assistance médicale à la procréation." Gynécologie Obstétrique & Fertilité 33, no. 9 (2005): 665–68. http://dx.doi.org/10.1016/j.gyobfe.2005.07.015.

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Andy Petroianu, M. D., Ph.D., Marco Antônio Barreto de Melo, and Luciana Magalhães de Almeida. "Sperm characteristics of men at different ages." Anais da Faculdade de Medicina de Olinda 1, no. 3 (2019): 20–23. http://dx.doi.org/10.56102/afmo.2019.58.

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Abstract:

Background: Knowledge regarding seminal fluid and spermatozoids in the elderly is controversial at best in the literature. The purpose of the present study was to analyze the relationship between male age and spermatozoid. Methods: The sperms of 80 healthy adult men, between 21 and 60 years of age, were studied after three to five days of sexual abstinence. Volunteers were distributed into four age groups (n = 20): 21-30, 31-40, 41-50 and 51-60 years of age.Results: No difference regarding the sperm’s physical and chemical characteristics (smell, color, volume, viscosity and pH) was found. The spermatozoid’s mobile forms showed no difference among the four groups. The concentration of spermatozoids proved to be higher in the semen of men of over 41 years of age, while in the 41 to 50 years of age group, the number of oval spermatozoids was higher (p = 0.03), with a less abnormal tapered form (p = 0.02) when compared to the other three groups. Conclusion: More normal forms of spermatozoids are found between 41 and 50 years of age.

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Hamouli-Said, Z., M. Baziz, and M. Habel. "Estimation des anomalies morphologiques du spermatozoïde chez une population algérienne de la région centre." Annales d'Endocrinologie 79, no. 4 (2018): 437. http://dx.doi.org/10.1016/j.ando.2018.06.792.

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